reforef.ru 1
Определение качественных характеристик пластиковых флаконов для культивирования клеточных культур, используемых в ветеринарной вирусологии.


Автор:

Хрунык Юлия Ярославовна (старший научный сотрудник), совместно с Порываева А.П., Бахарев А.А., Вялых И.В., Петропавловский М.В., Шкуратова И.А.

Организация: ГНУ Уральский научно-исследовательский ветеринарный институт РАСХН. Екатеринбург

Отзыв клиента:

Анонс работы


Многие клетки млекопитающих, прежде чем приступить к пролиферации и образовать клеточный монослой, должны прикрепиться к субстрату и «распластаться» на нем. В качестве субстрата в настоящее время используют несколько материалов, самыми распространенными из которых являются стекло и пластик. Рост клеток в клеточной культуре связан с образованием множества адгезионных контактов между клетками и материалом посуды. Такие контакты осуществляются с помощью адгезионных белков – фибронектина, витронектина и др. Кроме того, адгезия клеток осуществляется за счет электростатических взаимодействий, поэтому поверхность культуральных сосудов должна быть смачиваемой и отрицательно заряженной.
Целью данного исследования было сравнение адгезии и пролиферативной активности двух клеточных культур (диплоидной линии клеток легкого эмбриона человека ЛЭЧ-4/81 и перевиваемой клеточной линии почки теленка MDBK) в зависимости от инкубирования в разных культуральных флаконах: стеклянных и пластиковых (швейцарской компании TTP и корейской компании SPL LifeScience).

Материалы и методы исследования

В работе использовали диплоидную линию клеток легкого эмбриона человека (ЛЭЧ-4/81) и перевиваемую клеточную линию почки теленка MDBK, любезно предоставленные лабораторией клеточных культур Екатеринбургского научно-исследовательского института вирусных инфекций. В качестве питательной среды использовали смесь сред Игла-DMEM и Игла 199 в соотношении 1:1 (производство ФГУ НИИ полиомиелита и вирусных энцефалитов им. М.П. Чумакова, Москва) с добавлением 10% эмбриональной телячьей сыворотки ЭТС (НПО «ПанЭко», Москва). При пересеве культуры клеток питательную среду из флаконов сливали, монослой клеток заливали теплым раствором Версена-Трипсина (1:1) температурой 20-37°С в объеме 10-15 мл на 6-10 минут. Затем раствор Версена-Трипсина сливали и вносили питательную среду в объеме 5 мл и взбалтывали. 1 мл клеточной культуры отбирали для подсчета клеток в камере Горяева. Исходя из полученных при подсчете данных делали разведение с целью получения 80-100 тыс. клеток/мл в посадочной клеточной культуре. Клеточные культуры инкубировали в пластиковых флаконах двух видов: TTP (Швейцария) и SPL LifeScience (Корея), площадью по 25 см2 (рис. 1). В качестве контроля использовали стеклянные флаконы.





Рис. 1. В каждый флакон вносили по 10 мл клеточной культуры MDBK с посадочной концентрацией 88 тыс. клеток/мл. Для исследования использовали 3 вида разных флаконов: 1,2 – стеклянные флаконы; 3,4 – флаконы TTP, 5,6 – флаконы SPL LifeScience.

Флаконы с культурой клеток расчерчивали по диагонали для определения полей подсчета. Индекс адгезии (прилипания) клеток (ИАК) определяли через 24 часа инкубирования по формуле , где А – посадочная концентрация клеток в 1 мл; В – концентрация клеток в 1 мл ростовой среды через 24 часа инкубирования. Индекс пролиферации определяли как отношение количества клеток через 48 часов (К2) к количеству клеток через 24 часа (К1) по формуле К2:К1.

Результаты исследования и обсуждение

Посадочные концентрации клеточных культур составляли 88 тыс. клеток/мл и 180 тыс. клеток/мл для MDBK и ЛЭЧ-4/81, соответственно. При микроскопии флаконов с культурой клеток ЛЭЧ-4/81 после 24 часов инкубирования выявлено образование однородной популяции веретенообразных клеток с некоторым количеством не прикрепившихся к субстрату округлых клеток (рис.2).




Рис. 2. Микроскопия ЛЭЧ-4/81 после 24 часов инкубирования в флаконах TTP (а), и SPL LifeScience (б) из пластика и стеклянных флаконах (в). После того, как клетки ЛЭЧ «распластались» по субстрату, они принимают веретенообразную нативную форму. Желтые стрелочки указывают на округлые неприкрепившиеся клетки.



Индекс адгезии клеток ЛЭЧ-4/81 культивируемых в пластиковых флаконах был почти одинаковым и составлял 73,3% и 73,5% для TTP и SPL LifeScience, соответственно (таблица 1). Этот показатель несколько превышал значение индекса адгезии ЛЭЧ-4/81 инкубируемых на стеклянном субстрате, который составлял 66,7%.


Таблица 1. Индекс адгезии ЛЭЧ-4/81 в трех параллелях.

№ пробы

Стеклянный флакон

Пластиковый флакон SPL LifeScience

Пластиковый флакон TTP

В

103кл/мл

ИАК

%

В

103кл/мл

ИАК

%

В

103кл/мл

ИАК

%

1

58,9

67,3

47,7

73,5

48,8

72,9

2

61,7

65,7

47,3

73,7

47,9

73,4

3

59,2

67,1

48,3

73,2

47,5

73,6



59,9

66,7

47,8

73,5

48,1

73,3

При микроскопии флаконов с культурой клеток MDBK после 24 часов инкубирования выявлено наличие клеток полигональной формы, прикрепившихся к субстрату (рис. 3). Адгезия клеток MDBK, как и в случае с ЛЭЧ, была схожей для культур, инкубируемых в пластиковых флаконах и превышала значение индекса адгезии в культуре, инкубируемой в стеклянном флаконе (таблица 2). Отсюда можно сделать вывод, что клетки в обеих культурах прикреплялись к пластиковым флаконам лучше, чем к стеклянным. Возможно, это связано с более ровной поверхностью пластика. Однако, существенной разницы между индексами адгезии в пластиковых флаконах двух разных производителей не наблюдали.


Таблица 2. Индекс адгезии MDBK в трех параллелях.

№ пробы

Стеклянный флакон

Пластиковый флакон SPL LifeScience

Пластиковый флакон TTP

В

103кл/мл

ИАК

%

В

103кл/мл

ИАК

%

В

103кл/мл

ИАК

%

1

56,9

35,3

48,2

45,2

47,4

46,1

2

54,5

37,9

49,3

43,9

47,8

45,7

3

56,7

35,6

49,6

43,7

47,3

46,7



56,0

36,3

49,0

44,3

47,5

46,2




Рис. 3. Микроскопия MDBK после 24 часов инкубирования в флаконах TTP (а), и SPL LifeScience (б) из пластика и стеклянных флаконах (в). После того, как клетки MDBK распластились по субстрату, они принимают полигональную нативную форму. Черные стрелочки указывают на округлые неприкрепившиеся клетки. Неприкрепившиеся клетки в стеклянном флаконе видно очень плохо из-за оптических свойств стекла.

Значение индекса пролиферации клеток ЛЭЧ-4/81 и MDBK, культивируемых в разных флаконах, было схожим для всех трех типов флаконов (таблица 2). Из этого следует, что пролиферативная активность клеток не изменилась в зависимости от культивирования на исследуемых видах субстрата.

Таблица 3. Индекс пролиферации клеток ЛЭЧ-4/81 и MDBK через 48 часов инкубирования.

№ пробы

Стеклянный флакон

Пластиковый флакон SPL LifeScience

Пластиковый флакон

TTP

К1

К2

ИП

К1

К2

ИП

К1

К2

ИП

ЛЭЧ-4/81

120,1

231,8

1,8

132,2

246,1

1,9

132,0

247,2


1,9

MDBK

32,0


49,7

1,6

39,0

61,7

1,6

40,5

64,8

1,6

При микроскопии клеток через 94 часа выявлено наличие монослоя MDBK и ЛЭЧ-4/81 во всех исследуемых флаконах (рис. 4).




Рис. 4. Микроскопия сформировавшегося монослоя ЛЭЧ-4/81 (а, б) и MDBK (в, г) после 96 часов инкубирования в флаконах TTP (а, в), и SPL LifeScience (б, г).

Выводы

Таким образом, оба вида пластиковых флаконов (TPP и SPL LifeScience) являются пригодными для культивирования клеточных культур, используемых в ветеринарной вирусологии. Однако следует отметить следующие положительные особенности пластика компании TTP: удобство маркировки, высокую прозрачность, удобную и четкую градуировку объема клеточных культур, а также то, что крышки флаконов удобно и плотно открываются и закрываются. Благодарим компанию TTP за предоставленные образцы!